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實(shí)用免疫細(xì)胞與核酸:第六節(jié) 樣品處理與注意事項(xiàng)

一、樣品處理DNA是染色體的主要組成部分,是PCR的擴(kuò)增模板。要進(jìn)行PCR,研究DNA結(jié)構(gòu)與功能或者用于診斷目的,首先必須從生物體內(nèi)提取DNA。DNA往往以核蛋白形式存在,其分子量大(人的染色體DNA平均大小為3.0×109bp),提取DNA應(yīng)盡量保持DNA完整性和純度,即在提取中盡量…

一、樣品處理

DNA是染色體的主要組成部分,是PCR的擴(kuò)增模板。要進(jìn)行PCR,研究DNA結(jié)構(gòu)與功能或者用于診斷目的,首先必須從生物體內(nèi)提取DNA。DNA往往以核蛋白形式存在,其分子量大(人的染色體DNA平均大小為3.0×109bp),提取DNA應(yīng)盡量保持DNA完整性和純度,即在提取中盡量避免機(jī)械張力引起的DNA分子降解,又要注意雜質(zhì)及蛋白的去除,防止胞內(nèi)酶解DNA。因此,提取DNA的基本過(guò)程是:用Proteinase K及SDS,在EDTA存在下,裂解細(xì)胞,消化蛋白質(zhì),使核蛋白解聚及胞內(nèi)DNA酶失活,然后用酚/氯仿多次提取去除蛋白質(zhì),在DNA中若混有少量RNA,可用RNase去除,最后用乙醇沉淀得到DNA。

理論上PCR對(duì)模板DNA純度及完整性要求并不高,細(xì)胞經(jīng)過(guò)熱變性使DNA釋出就可以作為模板,依賴(lài)引物的選擇性進(jìn)行擴(kuò)增。這對(duì)拷貝數(shù)很多的基因組,確實(shí)如此。但當(dāng)待擴(kuò)增的拷貝數(shù)甚少而無(wú)關(guān)細(xì)胞甚多時(shí)則擴(kuò)增就不易成功,其原因是:①非希望的擴(kuò)增增多,掩蓋了所需擴(kuò)增的片段,使其數(shù)量減少至不能檢測(cè)到的程度。②生物樣品中的雜質(zhì)會(huì)抑制PCR反應(yīng),最主要的是血液和瓊脂糖。例如在100μl反應(yīng)液中加入1μl全血就可引起抑制,0.8μmol/L的血紅素也會(huì)引起明顯的抑制。對(duì)于含血液的樣品,可以用滲透壓溶解紅細(xì)胞,離心集取細(xì)胞核,洗除血紅蛋白,再用蛋白酶/表面活性劑處理的方法來(lái)解決。另一簡(jiǎn)單的方法是煮沸之,使釋放DNA,并沉淀Hb,用上清液作PCR。

現(xiàn)將PCR前處理各種標(biāo)本的基本方法介紹如下:

1.所需溶液

(1)PBs 0.85% W/V NaCl,66mmol/L Na3PO4pH7.0

(2)含表面活性劑及蛋白酶K的PCR緩沖液

50mmol/LKCl, 10mmol/L Tris-HCl(pH8.3) 2.5mmol/L MgCl2

0.1mg/ml明膠,0.45%NP40,0.45%吐溫20

高壓滅菌,冷凍儲(chǔ)存。臨用前加0.6μl的10mg/ml蛋白酶K(水溶液)至100μl溶液中。

(3)溶血緩沖液

0.32mol/L蔗糖,10mmol/L Tris-HCl pH7.5

5mmol/LMgCl2,1% Triton X-100

2.提取方法

(1)用聚蔗糖-泛影葡胺梯度法從血液或培養(yǎng)細(xì)胞分離的單核細(xì)胞(當(dāng)PBC〈10%細(xì)胞數(shù)時(shí)用此程序)

①將jfsoft.net.cn/jianyan/細(xì)胞樣品用PBS稀釋至10ml,置15ml錐形離心管中;

②100×g離心2~5min,吸去上清;

③細(xì)胞再懸浮于10ml PBS中重新離心洗滌;

④沉淀物懸浮于溶液2中,使細(xì)胞濃度約為6×106/ml,移至1.5ml管中;

⑤50~60℃保溫1h;

⑥95℃保溫10min使蛋白酶變性;

⑦冷凍儲(chǔ)存。

如果RBC多于細(xì)胞的10%,則用PBS洗1次(步驟1,2)后,懸浮于1ml溶液3,并轉(zhuǎn)移至1.5ml離心管中,如程序B-2離心1次,再懸浮于溶液2中按程序A-4繼續(xù)進(jìn)行。

(2)全血:此法使胞膜溶解故胞漿DNA丟失,約可得20μg DNA/0.5ml血。

①0.5ml全血與0.5ml溶液3共置1.5ml管中;

②13000×g離心20s;

③吸去上清,加1ml溶液3,旋渦混合使沉淀重新懸浮;

④重復(fù)第2,3步2次;

⑤13000×g離心2s,吸去上清,懸浮于0.5ml溶液2中;

⑥按程序A5~7步進(jìn)行。

(3)拭子

①用PBS預(yù)溫的試子從宮頸、陰道或陰莖采樣;

②拭子置入2ml PBS(含抗霉劑)于15ml離心管中,室溫可保存24h,置4℃可保存更長(zhǎng)時(shí)間。也可用旋渦混合器振蕩使細(xì)胞加速游離;

③取去拭子,2000~13000×g離心5min,吸去上清;

④如含RBC則加1ml溶液3,轉(zhuǎn)移至1.5ml E管中,按程序B-2開(kāi)始進(jìn)行;

⑤如不含RBC則加溶液2,按程序A-4進(jìn)行。

(4)頭發(fā)

①拔下頭發(fā),剪下頭發(fā)近端0.5cm段;

②置入0.4ml溶液2中(1.5ml管);

③按程序A5~7步進(jìn)行,用50μl體系作PCR。

(5)血細(xì)胞jfsoft.net.cn/zhicheng/RNA用焦碳酸二乙酯(DEP)抑制RNase,NP-40溶胞但不溶核。

①用聚蔗糖-泛影葡胺或其它方法分離單核細(xì)胞;

②置2ml離心管中,加PBS至細(xì)胞中,500×g離心5min;

③配制(DEP)溶液用無(wú)水乙醇將DEP作9+1稀釋?zhuān)儆肗P-400.5%作1:999稀釋?zhuān)ㄒ种芌Nase);

④細(xì)胞沉淀中加200~400μl此溶液,旋渦混合;

⑤13000×g離心10s;

⑥上清轉(zhuǎn)移至新管中,37℃保溫20min,90℃,10min;

⑦離心,上清轉(zhuǎn)移至新管。取5~10μl作反轉(zhuǎn)錄;

⑧如果反轉(zhuǎn)錄失敗,可能因DEP殘留,可將樣品再在90℃加熱5min,再做試驗(yàn);

⑨本法也可用于培養(yǎng)細(xì)胞。

二、注意事項(xiàng)

PCR只需幾個(gè)DNA分子作模板就可大量擴(kuò)增,應(yīng)注意防止反應(yīng)體系被痕量DNA模板污染和交叉污染,這是造成假陽(yáng)性最大的可能。下例可形象說(shuō)明污染的嚴(yán)重性。

典型的PCR反應(yīng)可在100μl反應(yīng)液中擴(kuò)增1012個(gè)DNA,此液傾入50nm×25m×2m的游泳池中,充分混合取0.1ml池水,其中含有40個(gè)分子的DNA,用PCR擴(kuò)增即已可呈陽(yáng)性,這一點(diǎn)對(duì)檢測(cè)HIV更為重要。常規(guī)只要15個(gè)拷貝的核酸即可查出。假陽(yáng)性結(jié)果往往來(lái)自痕量污染和交叉污染,尤其在待擴(kuò)增靶序列濃度低的情況下,更有必要采取防備措施。

(1)DNA處理最好用硅烷化塑料管以防粘附在管壁上,所有緩沖液吸頭、離心管等用前必須高壓處理,常規(guī)消耗用品用后作一次性處理,避免反復(fù)使用造成污染。

(2)PCR在超凈臺(tái)內(nèi)進(jìn)行,操作前后紫外燈消毒。

超凈臺(tái)內(nèi)設(shè)內(nèi)供PCR用微量離心機(jī)、一次性手套、整套移液器和其它必須品;移液品用一次性吸頭和活塞的正向排液器,防止移液器基部污染。

(3)PCR操作應(yīng)戴手套并勤于更換。

(4)成套試劑,小量分裝,專(zhuān)一保存,防止它用。配制試劑用新器具,用后作一次性處理。

(5)試劑管用前先瞬時(shí)離心(10s),使液體沉于管底,減少污染手套與加樣器機(jī)會(huì)。

(6)最后加模板DNA(包括在石蠟油后),馬上蓋好,混勻,瞬時(shí)離心(10s),使水相與有機(jī)相分開(kāi)。加入模板且忌噴霧污染,所有非即用管都應(yīng)蓋嚴(yán)。加模板DNA后應(yīng)更換手套。

(7)實(shí)驗(yàn)設(shè)陽(yáng)性、陰性對(duì)照。

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