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1 材料與方法
1.1 實驗動物 SD大鼠40只，雌雄各半，體重150～200 g，由中國人民解放軍軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院實驗動物中心提供。自由飲水、進(jìn)食，光照時間每日9 h以上。飼養(yǎng)1周后使用。
1.2 藥品與試劑 補腎化濁膠囊(滄州市中心醫(yī)院制劑室提供，批號：040504)，尿素氮(BUN)檢測試劑盒(批號：280221)，肌酐(Cr)檢測試劑盒(批號：320431)，總蛋白(TP)檢測試劑(批號：281181)，白蛋白(ALB)檢測試劑(批號：251851)，以上生化制劑均由中生北控生物科技股份有限公司提供。硫酸慶大霉素注射液(天津金耀氨基酸有限公司提供,2 ml∶8萬U，批號：0403022)，目測八聯(lián)試紙(由廣州市花都高爾寶生物技術(shù)有限公司提供生產(chǎn)日期：20040325)，蒸餾水。
1.3 儀器與設(shè)備 全自動生化分析儀(美國泰爾康公司生產(chǎn)TECHNICON RAl000型)，離心機，一次性注射器(5 ml、1 ml)，灌胃器，手術(shù)剪，手術(shù)鑷子，一次性尖頭試管。
1.4 藥液配制 補腎化濁膠囊低劑量混懸液(108 g/L)蒸餾水配制，補腎化濁膠囊高劑量混懸液(324 g/L) 蒸餾水配制。
1.5 分組與用藥 40只大鼠，隨機分為4組，對照組、腎損傷模型組、補腎化濁膠囊高劑量組和補腎化濁膠囊低劑量組，每組10只。補腎化濁膠囊高劑量組和補腎化濁膠囊低劑量組分別灌服混懸液，按1 ml·100 g-1·d-1給藥，連續(xù)4周。期間從第21天皮下注射GM 100 mg·kg-1·d-1，共8 d。對照組、腎損傷模型組：每天灌服同體積水，連續(xù)4周。期間腎損傷模型組從第21天皮下注射GM 100 mg·kg-1·d-1，共8 d。4組均于末次給藥2 h后，取尿和血進(jìn)行測定。
1.6 觀察指標(biāo) 本實驗中，尿檢采用目測八聯(lián)試紙半定量法測定蛋白總量、尿糖、酮體、葡萄糖、尿液pH值。大鼠取血均未麻醉，采用眼眶靜脈取血3～5 ml，離心后取上層血清在全自動生化分析儀測定BUN(速率法)、Cr(苦味酸法)、TP(雙縮脲法)和ALB(溴甲酚綠法)。處死后觀察腎臟外觀。
1.7 統(tǒng)計學(xué)分析 計量資料以±s表示，采用單因素方差分析，組間比較采用q檢驗，P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義醫(yī).學(xué)全.在.線網(wǎng)站jfsoft.net.cn。
2 結(jié)果
2.1 補腎化濁膠囊對尿液生化指標(biāo)的影響 高、低劑量的補腎化濁膠囊能顯著降低由GM導(dǎo)致的急性腎損傷大鼠尿中蛋白總量、尿糖及酮體，恢復(fù)尿液pH值(P<0.05)，與對照組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見表1。表1 4組尿液生化指標(biāo)比較注：與對照組比較，^P<0.01;與腎損傷模型組比較，#P<0.05，△P<0.01
2.2 補腎化濁膠囊對血清生化指標(biāo)的影響 高、低劑量的補腎化濁膠囊均能顯著降低GM腎損傷模型大鼠BUN、Cr含量(P<0.01)，與對照組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見表2。高、低劑量的補腎化濁膠囊顯著提高GM腎損傷模型大鼠血清TP、ALB總量(P<0.01)，較對照組差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見表3。表2 4組血清生化指標(biāo)的影響n=10，±s表3 4組血清蛋白比較注：與對照組比較，^P<0.01;與腎損傷模型組比較，#P<0.01
2.3 補腎化濁膠囊對大鼠腎臟器官影響的外觀檢查 對照組大鼠腎臟大小、形狀均正常，表面光滑，暗紅色，包膜菲薄無粘連，易于剝離，切面皮質(zhì)與髓質(zhì)紋理清楚，腎盂部位黏膜光滑，未見滲出物。模型組則比較肥大出現(xiàn)不同程度的滲出血，皮質(zhì)與髓質(zhì)間出現(xiàn)紅斑。低劑量組有所改善，而高劑量組幾乎看不到上述現(xiàn)象。
3 討論
Cr、BUN是反映腎臟功能的敏感指標(biāo)。有資料表明，Cr、BUN水平與機體尿酸含量呈正相關(guān)，高尿酸血癥可直接導(dǎo)致腎臟器質(zhì)性損傷并且伴有冠狀動脈硬化等糖尿病并發(fā)癥[2]。本研究表明補腎化濁膠囊能有效減少急性腎損傷大鼠的Cr、BUN水平，從而抑制高尿酸血癥的形成，減少尿酸鹽對腎臟的損害。
